Efeito do silício na micropropagação de cana-de-açúcar (variedade RB966928)

Autores

DOI:

https://doi.org/10.53660/PRW-1847-3504

Palavras-chave:

Cultivo in vitro, Mudas, Saccharum officinarum L.

Resumo

O silício utilizado na micropropagação pode ser acumulado na cutícula das folhas, permitindo proteção às plantas, aumento da capacidade fotossintética, redução de perda de água e, ainda, promove maior crescimento. Objetivou-se avaliar o efeito do silício na micropropagação de cana-de-açúcar (variedade RB966928). Perfilhos com 5 cm de comprimento, de plantas cultivadas in vitro, foram submetidos a dois tipos de sistemas de cultivo: meio sólido e biorreator de imersão temporária (B.I.T.), suplementando o meio de cultura com diferentes fontes (silicato de cálcio e silicato de sódio) e concentrações de silício (0,0; 1,0 e 2,0 g L-1). Após 45 dias, avaliou-se o número de perfilhos (NP), comprimento da parte aérea (CPA), massa fresca (MF) e massa seca (MS). Para a micropropagação convencional de cana-de-açúcar (variedade RB966928), recomenda-se a suplementação do meio de cultura com 1,0 g L-1 de silicato de sódio para a obtenção de plantas com maiores MF e MS. Para a micropropagação em B.I.T, recomenda-se o meio de cultura suplementado com 1,0 g L-1 de silicato de cálcio para maior perfilhamento, 1,0 g L-1 de silicato de sódio para obtenção de plantas com maior CPA e 2,0 g L-1 de silicato de cálcio para obtenção de plantas com maior MF.

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Referências

ASMAR, S. A.; PASQUAL, M.; ARAUJO, A. G.; SILVA, R. A. L.; RODRIGUES, F. A.; PIO, L. A. S. Características morfofisiológicas de bananeiras ‘Grande Naine’ aclimatizadas em resposta a utilização de silício in vitro. Semina: Ciências Agrárias, Londrina, v. 34, n. 1, p. 73-82, jan./fev. 2013.

BRAGA, F. T. B.; NUNES, C. F.; FAVERO, A. C.; PASQUAL, M.; CARVALHO, J. G.; CASTRO, E. M. Características anatômicas de mudas de morangueiro micropropagadas com diferentes fontes de silício. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v.44, n.2, p.128-132, fev. 2009.

DEMATTÊ, J. L. I.; PAGGIARO, C. M.; BELTRAME, J. A.; RIBEIRO, S. S. Uso de silicatos em cana-de-açúcar. Informações Agronômicas, v. 133, p. 7-12, 2011.

DUAN, X., TANG, M., WANG, W. Effects of silicon on physiology and biochemistry of Dendrobium moniliforme plantlets under cold stress. Agricultural Biotechnology, v. 2, n. 3, p. 18, 2013.

EPSTEIN, E. Silicon. Annual Review of Plant physiology and Plant Molecular Biology, Palo Alto, v. 50, p. 641-664, 1999.

FERREIRA, D. F. Sisvar 5.6: um sistema computacional de análise estatística. Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v. 35, n. 6, Nov./Dez., 2011.

FRANCA, M. A. Micropropagação de cana-de-açúcar cultivar RB966928. Curitiba, 2016.

GARCÍA-MERINO, G. F.; RAMÍREZ-MOSQUEDA, M. A.; AGUILAR-RIVERA, N.; HIDALGO-CONTRERAS, J. V.; BURCHI, G.; LEYVA-OVALLE, O. R. Increase of the morpho-physiological responses of sugarcane plants in vitro (Saccharum spp. hybrids) using sodium silicate. South African Journal of Botany, v. 162, p. 193-200, 2023.

KAUR, A.; SANDHU, J. S. High throughput in vitro micropropagation of sugarcane (Saccharum officinarum L.) from spindle leaf roll segments: Cost analysis for agri-business industry. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 120, n. 1, p. 339-350, 2015.

LIM, M. Y.; LEE, E. J.; JANA, S.; SIVANESAN, I.; JEONG, B. R. Effect of potassium silicate on growth ad leaf epidermal characteristics of begonia and pansy grown in vitro. Korean Journal of Horticultural Science and Technology, v. 30, n. 5, p. 579-585, 2012.

MALAVOLTA, E. Manual de nutrição mineral de plantas. São Paulo: Editora Agronômica Ceres, 2006. 638 p.

MARAFON, A. C. Benefícios do silício para a cana-de-açúcar. 2013.

MUNEER, S., JEONG, B. R. Proteomic analysis of salt-stress responsive proteins in roots of tomato (Lycopersicon esculentum L.) plants towards silicon efficiency. Plant Growth Regulation, v. 77, p. 133-146, 2015.

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. A. Revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, Copenhagen, v. 15, n. 3, p. 473- 497, 1962.

SAWANT, R. A.; TAWAR, P. N.; METI, N. T.; RANJEKAR, P. K. Role of sugarcane micropropagation for production of quality seed. International Journal of Recent Biotechnology, v. 2, n. 4, p. 34-41, 2014.

SILVA, D. P. C. Meios de cultura e fontes de silício no desenvolvimento in vitro de gérbera. 2007. 84 p. Dissertação (Mestrado em Agronomia/Fisiologia Vegetal) - Universidade Federal de Lavras. Lavras, MG.

TALUKDAR, P.; HARTLEY, S. E.; TRAVIS, A. J.; PRICE, A. H.; NORTON, G. J. Genotypic differences in shoot silicon concentration and the impact on grain arsenic concentration in rice. Journal of Plant Nutrition and Soil Science, v. 182, n. 2, p. 265-276, 2019.

THE JAMOVI PROJECT (2022). Jamovi (Version 2.3.26) [Computer Software]. Retrieved from https://www.jamovi.org.

VIAN, C. E. F. Cana - Mercado. Embrapa Agência de Informação Tecnológica, 2022. Disponível em: <https://www.embrapa.br/agencia-de-informacao-tecnologica/cultivos/cana/pre-producao/socioeconomia/mercado>. Acesso em 20 set. 2023.

WANG, Y.; ZHANG, B.; JIANG, D.; CHEN, G. Silicon improves photosynthetic performance by optimizing thylakoid membrane protein components in rice under drought stress. Environmental and Experimental Botany, v. 158, p. 117-124, 2019.

YIN, L.; WANG, S.; TANAKA, K.; FUJIHARA, S.; ITAI, A.; DEN, X.; ZHANG, S. Silicon‐mediated changes in polyamines participate in silicon‐induced salt tolerance in Sorghum bicolor L. Plant, Cell & Environment, v. 39, n. 2, p. 245-258, 2016.

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Publicado

2024-02-27

Como Citar

Matsunaga, L. Y. ., Rezende, R. K. S., Santos, N. B. dos ., & Jesus, M. V. . (2024). Efeito do silício na micropropagação de cana-de-açúcar (variedade RB966928). Peer Review, 6(3), 316–326. https://doi.org/10.53660/PRW-1847-3504

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